محیط زیست و توسعه فرابخشی
مجله علمی

معرفی و شناسایی کرم‌های پرتار خانواده Nereididae در منطقه خلیج‌‌فارس (آب‌های ساحلی استان بوشهر) و جایگاه آن در توسعه آبزی‌پروری

نوع مقاله : مقاله علمی - پژوهشی

نویسنده

مسلم شریفی نیا

پژوهشکده میگوی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران

https://doi.org/10.22034/envj.2024.463521.1384
چکیده
مقدمه: ﻛﺮمﻫﺎی پرﺗﺎر خانواده نرئیدیده (Nereididae) به صورت گسترده‌­ای به عنوان غذای زنده برای تسریع رسیدگی جنسی و تولید گنادهای جنسی با کیفیت مولدین میگو استفاده می­‌شوند. این غذای زنده در مقایسه با غذاهای تجاری به علت دارا بودن مقادیر بالای اسیدهای چرب غیر اشباع بلند زنجیره تأثیر بسزایی در فرآیند گامتوژنز میگوهای دریایی دارد و باعث افزایش تعداد تخم­‌های تولیدی و تخم­گشایی در آن‌ها می­‌شود. پرورش گونه‌­های بومی راه حل مناسبی برای تولید پایدار کرم­‌های پرتار می­‌باشد. این نوع تولید می‌­تواند نیازهای مختلفی را برآورده کند.
مواد و روش‌­ها: مطالعه حاضر با هدف شناسایی و گزارش گونه­‌های خانواده نرئیدیده در خلیج فارس و در محدوده آب­‌های استان بوشهر به مدت یک سال انجام شد. جمع­آوری نمونه‌­های پرتاران در هر ایستگاه با استفاده از نمونه­‌بردار ون وین گرب (Van Veen Grab) انجام­ شد. در هر ایستگاه سه نمونه رسوب برای جداسازی و شناسایی پرتاران برداشت شد و نمونه رسوب بلافاصله به کمک الک 500 میکرون مستقر بر روی کشتی، با استفاده از آب دریا شستشو داده شدند. جهت شناسایی نمونه‌­ها، ابتدا کفزیان بزرگتر، با چشم غیر مسلح و ذره بین جداسازی گردید. نمونه­‌های جداسازی شده با استفاده از استریومیکروسکوپ مجهز به دوربین تصویربرداری شده و با استفاده از کلیدهای مربوطه شناسایی شدند.
نتایج: طبق نتایج به‌­دست آمده در مطالعه حاضر 6 گونه Perinereis heterodonta، P. nuntia ، Perinereis sp.، Ceratonereis sp.1، Ceratonereis sp.2 و Nicon sp. متعلق به سه جنس Perinereis، Ceratonereis و Nicon از خانوادهNereididae  در خلیج فارس شناسایی شدند.
بحث: با توجه به نقش حیاتی کرم‌های پرتار در فرآیند تکثیر میگو، شناسایی و استفاده از گونه‌های بومی این خانواده می‌تواند به بهبود عملکرد مراکز تکثیر کمک کند و به دنبال آن، به منجر به توسعه پایدار صنعت آبزی‌پروری شود.

کلیدواژه‌ها

کرم پرتار
آبزی پروری
میگو
ماهی
خلیج فارس

موضوعات

  1. Al-Omari, N.H.A., 2011. A guide to polychaetes (Annelida) in Qatar marine sediments. Qatar University Environmental Studies Center.
  2. Al-Yamani, F.Y., Skryabin, V., Boltachova, N., Revkov, N., Makarov, M., Grintsov, V. and Kolesnikova, E., 2012. Illustrated atlas on the zoobenthos of Kuwait. Kuwait institute for scientific research, 383.
  3. Bakken, T. and Wilson, R.S., 2005. Phylogeny of nereidids (Polychaeta, Nereididae) with paragnaths. Zoologica Scripta 34, 507-547.
  4. Bartholomew, A., 2001. Polychaete Key for Chesapeake Bay and Coastal Virginia.
  5. Briggs, M., Brown, J. and Fox, C., 1994. The effect of dietary lipid and lecithin levels on the growth, survival, feeding efficiency, production and carcass composition of post‐larval Penaeus monodon Fabricius. Aquaculture Research 25, 279-294.
  6. Brown, N., Eddy, S. and Plaud, S., 2011. Utilization of waste from a marine recirculating fish culture system as a feed source for the polychaete worm, Nereis virens. Aquaculture 322, 177-183.
  7. Cardinaletti, G., Mosconi, G., Salvatori, R., Lanari, D., Tomassoni, D., Carnevali, O. and Polzonetti-Magni, A.M., 2009. Effect of dietary supplements of mussel and polychaetes on spawning performance of captive sole, Solea solea (Linnaeus, 1758). Animal reproduction science 113, 167-176.
  8. Carvalho, S., Barata, M., Gaspar, M.B., Pousão-Ferreira, P. and da Fonseca, L.C., 2007. Enrichment of aquaculture earthen ponds with Hediste diversicolor: consequences for benthic dynamics and natural productivity. Aquaculture 262, 227-236.
  9. Day, J.H., 1955. The Polychaeta of South Africa. Part 3. Sedentary species from cape shores and estuaries. Zoological Journal of the Linnean Society 42, 407-452.
  10. De Carvalho, A.N., Vaz, A.S.L., Sérgio, T.I.B. and dos Santos, P.J.T., 2013. Sustainability of bait fishing harvesting in estuarine ecosystems–Case study in the Local Natural Reserve of Douro Estuary, Portugal. Revista de Gestão Costeira Integrada-Journal of Integrated Coastal Zone Management 13, 157-168.
  11. Fang, J., Jiang, Z., Jansen, H.M., Hu, F., Fang, J., Liu, Y., Gao, Y. and Du, M., 2017. Applicability of Perinereis aibuhitensis Grube for fish waste removal from fish cages in Sanggou Bay, PR China. Journal of Ocean University of China 16, 294-304.
  12. Fauchald, K., 1977. The polychaete worms. Definitions and keys to the orders, families and genera. Natural History Museum of Los Angeles County, Science Series.
  13. Font, T., Gil, J. and Lloret, J., 2018. The commercialization and use of exotic baits in recreational fisheries in the north‐western Mediterranean: Environmental and management implications. Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems 28, 651-661.
  14. Fujii, T., Pondella, D.J., Todd, V.L. and Guerin, A.J., 2023. Seafloor heterogeneity: Artificial structures and marine ecosystem dynamics-recent advances. Frontiers in Marine Science 10, 1181568.
  15. Gopakumar, G., George, R.M. and Jasmine, S., 2001. Hatchery production of the clownfish Amphiprion hrysogaster.
  16. Haryadi, D., Verreth, J.A., Verdegem, M.C. and Vlak, J.M., 2015. Transmission of white spot syndrome virus (WSSV) from Dendronereis spp. (Peters)(Nereididae) to penaeid shrimp. Journal of fish diseases 38, 419-428.
  17. Hoang, T., Murphy, B., Kim, L.C., Stratford, C. and Stevenson, C., 2022. Effects of temperature on farmed marine polychaete Perinereis helleri and its fatty acid profile. Aquaculture, Fish and Fisheries 2, 216-223.
  18. Huang, K., Zha, S., Liu, G., Zhang, M., Xiao, G., Yan, M. and Hu, L., 2019. Impacts feeding Perineresis aibuhitensis and Loligo duvancelii on the growth performance and energy supply genes expression of Litopenaeus vannamei. J. Shandong Agric. Univ. (Nat. Sci. Ed.) 50, 112-117.
  19. Leelatanawit, R., Uawisetwathana, U., Khudet, J., Klanchui, A., Phomklad, S., Wongtripop, S., Angthoung, P., Jiravanichpaisal, P. and Karoonuthaisiri, N., 2014. Effects of polychaetes (Perinereis nuntia) on sperm performance of the domesticated black tiger shrimp (Penaeus monodon). Aquaculture 433, 266-275.
  20. Lerberg, H.N., Petersen, M.E., Nestlerode, J. and Hinchey, E., 2014. Polychaete Key for Chesapeake Bay and Coastal Virginia.
  21. Liu, S., Rao, M., Cowley, J.A., Morgan, J.A., Barnes, A.C. and Palmer, P.J., 2020. Polychaetes (Perinereis helleri) reared in sand beds filtering nutrients from shrimp (Penaeus monodon) culture ponds can transiently carry IHHNV. Aquaculture 528, 735560.
  22. Marques, B., Calado, R. and Lillebø, A.I., 2017. New species for the biomitigation of a super-intensive marine fish farm effluent: combined use of polychaete-assisted sand filters and halophyte aquaponics. Science of The Total Environment 599, 1922-1928.
  23. Meunpol, O., Meejing, P. and Piyatiratitivorakul, S., 2005. Maturation diet based on fatty acid content for male Penaeus monodon (Fabricius) broodstock. Aquaculture Research 36, 1216-1225.
  24. Mosbahi, N., Pezy, J.P., Dauvin, J.C. and Neifar, L., 2015. Short-term impact of bait digging on intertidal macrofauna of tidal mudflats around the Kneiss Islands (Gulf of Gabès, Tunisia). Aquatic Living Resources 28, 111-118.
  25. Murugesan, P., Elayaraja, S., Vijayalakshmi, S. and Balasubramanian, T., 2011. Polychaetes—A suitable live feed for growth and colour quality of the clownfish, Amphiprion sebae (Bleeker, 1953). J. Mar. Biol. Assoc. India 53, 1-7.
  26. Olive, P.J., 1999. Polychaete aquaculture and polychaete science: a mutual synergism. Reproductive Strategies and Developmental Patterns in Annelids, 175-183.
  27. Palmer, P.J., 2010. Polychaete-assisted sand filters. Aquaculture 306, 369-377.
  28. Pombo, A., Baptista, T., Granada, L., Ferreira, S.M., Gonçalves, S.C., Anjos, C., Sá, E., Chainho, P., Cancela da Fonseca, L. and Fidalgo e Costa, P., 2020. Insight into aquaculture's potential of marine annelid worms and ecological concerns: a review. Reviews in Aquaculture 12, 107-121.
  29. Rouabah, A. and Scaps, P., 2003. Life cycle and population dynamics of the polychaete Perinereis cultrifera from the Algerian Mediterranean Coast. Marine Ecology 24, 85-99.
  30. Sá, E., e Costa, P.F., da Fonseca, L.C., Alves, A.S., Castro, N., dos Santos Cabral, S., Chainho, P., Canning-Clode, J., Melo, P. and Pombo, A.M., 2017. Trade of live bait in Portugal and risks of introduction of non-indigenous species associated to importation. Ocean & Coastal Management 146, 121-128.
  31. Santos, A., Granada, L., Baptista, T., Anjos, C., Simões, T., Tecelão, C., e Costa, P.F., Costa, J.L. and Pombo, A., 2016. Effect of three diets on the growth and fatty acid profile of the common ragworm Hediste diversicolor (OF Müller, 1776). Aquaculture 465, 37-42.
  32. Stewart, E.C., Bribiesca‐Contreras, G., Taboada, S., Wiklund, H., Ravara, A., Pape, E., De Smet, B., Neal, L., Cunha, M.R. and Jones, D.O., 2023. Biodiversity, biogeography, and connectivity of polychaetes in the world's largest marine minerals exploration frontier. Diversity and Distributions.
  33. Wang, H., Seekamp, I., Malzahn, A., Hagemann, A., Carvajal, A.K., Slizyte, R., Standal, I.B., Handå, A. and Reitan, K.I., 2019. Growth and nutritional composition of the polychaete Hediste diversicolor (OF Müller, 1776) cultivated on waste from land-based salmon smolt aquaculture. Aquaculture 502, 232-241.
  34. Yang, D., Wang, C., Kou, N., Xing, J., Li, X., Zhao, H. and Luo, M., 2022. Gonadal maturation in Litopenaeus vannamei fed on four different polychaetes. Aquaculture Reports 22, 100920.
محیط زیست و توسعه فرابخشی
دوره 9، شماره 84
تابستان 1403
صفحه 41-54

صفحه اصلی

ارسال مقاله

تماس با ما